فایلت

چالش عمده ایی که بیولوژیست ها در رابطه با رشد ونمو گیاه با آن مواجه اند به درک مکانیسم های بر می گردد که رشد و نمو کلی سیستم های پیچیده را کنترل می کنند. مطالع? حاضر بر مکانسم هایی متمرکز است که تفکیک، رشد و معماری سیستم های ریشه را شکل میدهند. نقش نشان? رش?اصلی  یعنی سیتوکینن (CK) به همراه نقش نشان? شاخه یعنی اکسین( ایندول-3- استیک اسید، IAA) و واکنش آنها تجزیه و تحلیل خواهد شد (Coenen و Lomax 1997، Bangerth و دیگران 2000؛ Nordstro¨m و دیگران 2004؛ Woodward و Bartel 2005). ستوکینن ها مولکول های نشانه دهی هورمونی هستند که نقش اساسی در تنظیم سیتوکینن ها، رشد و نمو در گیاهان ایفا می کنند. در یک گیاه دست نخورده، سلول های زند? ریشه و شاخه هر دو قادرند CKها و همچنین هورمون های نشانه دهی اکسین را تولید کنند(Miyawaki و دیگران 2004، Nordstro¨m و دیگران، 2004؛ Aloniو دیگران 2005؛ Tanaka و دیگران 2005). بااینحال،  با وجود اینکه  CK و IAA هر دو در ریشه و شاخه تولید می شوند (Nordstro¨m و دیگران 2004، Ljungو دیگران 2005) اما تولید این نشانه های هورمونی عمده به صورت تصادفی رخ نمی دهد. بلکه توسط مکان سلولهای سنتز کننده در بدن? گیاه و مرحل? نموی آنها تنظیم میشود و تحت تأثیر شرایط محیطی می باشد. اندام های جوان شاخه ، جایگا های اصلی تولید IAA هستند (Aloni و دیگران 2003،2006)، در حالی که نوک های ریشه جایگاه اصلی سنتز CKهستند ( Aloniودیگران 2004،2006).

نشانه ها از جایگاه های تولید هورمون از طریق مسیرهای ساختاری خاص و توسط مکانیسم های مختلف حرکت می کنند تا تفکیک و نمو گیاه را تنظیم کنند (Aloni 2004، Aloni و دیگران 2005). عدم بیان ایزوپنتنیل ترانس فراز (IPT ) در مریستم های رأسی شاخه(Miyawaki و دیگران 2004) با نبود CK آزاد در مریستم های رأسی شاخ? جوانه های 3 روز? آرابیدوپسیس تالیانا (Aloni و دیگران 2004) همخوانی سازگاری داشت و نبود آن در جوانه های جانبی گیاهان مسن تر که تحت شرایط تقریبا بدون تعرق رشد یافته بودند (Aloni و دیگران 2005) نشان می دهد که جوانه های رأسی شاخه ، ظاهرا جایگاه اصلی سنتز CK نیستند (شکل 1).

مطالع? حاضر اولین گزارش دربار? تشکیل کشت های کالوزگیاهکی از بافت جوانه، احیای گیاهان از طریق گیاهک زایی سوماتیک و پیشرفت سیستم احیا ازپروتوپلاست به گیاه با استفاده از سه گون? وحشی Cyclamen یعنی Cyclamen graecum Link،Cyclamen mirabile Hildebrand و Cyclamen trochopteranthum Schwarz می باشد ( واژه مترادف Sprenger Cyclamen alpinum hort. Dammann ex). امکان تشکیل کالوز گیاهک و احیا از طریق گیاهک زایی سوماتیک برای هر گونه شدبدا به ژنوتیپ وابسته بود. از 0.5 g کالوز، حدود 1461 گیاهک سوماتیک در موقعی  C. mirabile تشکیل شد. محیط های کشت با غلظت های متفاوتی از تنظیم کننده های رشدی گیاه، CaCl2 و زغال چوب فعال شده تأثیر قابل توجهی بر شکل گیری گیاهک در گونه داشتند. حدود 1.4×106 پروتوپلاست از 1 g تعلیق سلول C. graecum جدا شدند. پاسخ های رشدی گوناگون پروتوپلاست ها در دو عامل تعبیه کننده یعنی آگارز و آلگینات برای گونه های مختلف Cyclamen مشاهده شد. این ویژگیهای رشدی خاص به عنوان نشانگر گزینش برای آزمایشات ترکیبی(fusion) در آینده استفاده شدند. برای هردو سیستم کشت پروتوپلاست، گیاهک هایسوماتیک احیا شدند، برای plantlets پرورش داده شدند و با شرایط گلخانه ایی سازگار شدند.

کلید واژه ها : آگاروز، آلگینات، Cyclamen alpinum، Cyclamen graecum، Cyclamen mirabile، گیاه سیکلامن، جداسازی پروتوپلاست، تکثیر رویشی

1.مقدمه:

دست? (Cyclamen Myrsinaceae) شامل تقریبا 22 گونه میشود (Grey-Wilson،2003) که عمدتا در کشورهای اطراف و آبگیر مدیترانه ایی پراکنده هستند. برخی گونه ها از قرن هجدهم در کشورهای اروپای غربی کشت شده اند. اما تنها گونه ایی که اهمیت اقتصادی جهانی داشته Cyclamen persicum Miller بود. استثنائاتی وجود دارد و آن این که برخی گونه ها مانند C. coum Miller و C. hederifolium Aiton بندرت کشت میشوند. زیرا رشد آنها کند است و ملزومات کشت آنها بسیار ناشناخته است. Cyclamen graecum Link در قسمت هایی از یونان و جزایر آن یافت میشود. Cyclamen mirabile Hildebrand و همچنین  Cyclamen trochopteranthum Schwarz (مترادف Cyclamen alpinum hort. Dammann ex Sprenger) بومی منطق? جنوب غرب آنتالیا در ترکیه می باشد (Grey-Wilson، 2003). سه گونه به دلیل برخی ویژگی های باارزش که در کالتیوارهای C. persicum وجود ندارد، انتخاب شدند.

شناسایی ریزماهواره ها در بین پشیز بالان بسیار ضعیف بوده است.  ما نشان داده ایم که انجام ISSR امکان پذیر است و کاربردپذیری آنها در تغییر specific-inter و intra در برخی جمعیت های شب پره را نشان خواهیم داد. 

پشیز بالان نسبت به تغییرات آب و هوایی و زیستگاه حساس هستند. ما جمعیت های شب پره را در زیستگاه های طبیعی و توزیع شده در کوه های پیرنه کشور فرانسه آنالیز می کنیم. ما سعی کردیم که به یک روش چندبعدی قابل استفاده در تعیین گونه ها دست یابیم تا بدین ترتیب تفاوت های ژنتیکی جزئی در ژنوم هست? بید را نشان دهیم. 

در مقایسه با سایر حیوانات، مطالعات ریزماهواره ای نسبتا کمی بر روی  پشیز بالان انجام گرفته است.  تنها چند مطالعه ایت که بر روی ISSR کار کرده اند. یکی از دلایل آن ان است که تصور میشده  که ریزماهوارها در پشیز بالان وجود ندارد یا اینکه به ندرت یافت می شوند.  بااینحال، Meglecz و Solignac(1998) و Happer و دیگران مکان تکرارها را در ریزماهواره هایی حشرات با موفقیت تعیین کردندn (CA ). 

ما دریافتم که :1) پرایمر n(CA ) بیشترین پروفایل های اطلاعات را ارائه می دهد 2) پروفایل های DNA بین گونه ها اساسا با هم فرق دارد 3) از مقایس? پروفایل های ISSR می توان برای مطالع? تغییر intra و inter با موفقیت استفاده کرد. 

در مقاله حاضر، تلاش هایی برای بهینه سازی متغیرهای فرایند فیزیکی یعنی؛ PH، دما و سرعت همزدن  برای افزایش تولید پلی هیدروکسی بوتیرات (PHB) در کشت دسته ای توسط آلکالی ژن های Sp صورت گرفته است، که بعنوان پیش ماده برای تولید پیش سازهای بیوپلاستیک ها (PHB) بکار می رود. انتخاب جریان توسط روش رنگ آمیزی بادوام با استفاده از رنگ نیل آبی A انجام می گیرد. در کشت و صنعت محصولات، ملاس نیشکر و اوره به عنوان منبع کربن و نیتروژن برای تولید PHB مورد استفاده قرار گرفت. بهینه سازی متغیرهای فرآیند فیزیکی توسط طراحی قابل گردش کامپوزیت مرکزی (CCRD) با استفاده از کارشناس نرم افزار طراحی (DX 8.0.6) انجام شد. لرزش فلاسک کشت تحت شرایط مطلوب یعنی، دمای 34.5 درجه سانتیگراد،  pH 6.54 و سرعت همزدن 3.13 هرتز، دارای عملکرد بخش PHB 76.80? در بستر ملاس خشک است و در حدود 98? با عملکرد درصد پیش بینی شده 77.78? شباهت نشان داد. کشت دسته ای بیشتر در 7.5 L در مقیاس راکتوری آزمایشگاه (حجم کارکردی: 5.6 L) تحت شرایط بهینه حداکثر زیست توده سلولی gL-10.511را با PHB با محتوای gL-10.48.8، پس از 48 ساعت تخمیر ایجاد می نماید . مطالعه مقیاس بیو راکتوری دارای حداکثر بازده PHB ، (YP / X) و بهره وری 0.78 و gL-1 h0.19 بود که بیشتر از گزارش های قبلی تحت شرایط یکسان است. خواص PHB توسط FTIR انجام شد.

کلیدواژه: آلکالی ژن های sp، متغیرهای فرایند فیزیکی، بهینه سازی، تولید PHB، خصوصیات

از زمان تکمیل توالی های ژنومی ارگانیسم های متعدد ، تجزیه و تحلیل پروتئوم توجهات را به تعیین کارکرد و شبک? کارکردی پروتئین ها معطوف کرده است.این تجزیه و تحلیل با جدا سازی و شناسایی پروتئین ها، تعیین کارکرد و نقش آنها و شبک? کارکردی و ساخت یک پایگاه داده ای مناسب حاصل می شود. پیشرفت های بسیاری در زمین? جداسازی و شناسایی پروتئین ها مانند الکتروفروز دو بعدی ،کروماتوگرافی نانو مایع و طیف سنجی جرمی به سرعت حاصل شده اند. برخی تکنولوژی های جدید مانند طیف سنجی جرمی بالا- پایین  و خاص سازی میل ترکیبی پشت سر هم  بوجود آمده است. این روش ها امکان تجزیه و تحلیل توان عملیاتی زیاد کارکرد و شبک? کارکردی پروتئین ها در گیاهان را فراهم می کند. اما برای رسیدگی به اطلاعات زیاد حاصل از این تجزیه و تحلیل های پروتئوم ، روش ها و نرم افزارهای پیچیده تری لازم است. پیشرفت و انطباق این تکنیک ها ، تجزیه و تحلیل برش عمودی پروتئین ، شناسایی تغییرات بعد از ترجمه و فعل و انفعال پروتئین پروتئین را آسان می کند که برای روشن سازی وظایف پروتئین حیاتی است. 

کلیدواژه: پروتئوم،طیف سنجی جرمی، برش عمودی پروتئین ، تغییرات بعد از ترجمه، و فعل و انفعال پروتئین- پروتئین، گیاه

ما جهش یافته های مریستم شاخ? مسطح (fsm) درگیاه برنج را جدا کردیم که رشد ناقص جوانه رانشان دادند ودرمرحل? رویش خشک شدند.  از آنجائیکه اکثر گیاهان fsm  دارای مریستم (بخشینه) های راسی شاخ? کوچک و مسطح بودند( SAMها) ،ما نشان خواهیم داد که FSM برای حفظ کامل SAM لازم است. FSM یک ارتولوگ مفروض FASCIATA1 آرابیدوپسیس (FAS1) را رمزگذاری میکند که با زیرواحد p150 عامل 1اجتماع کروماتین (CAF-1) مطابقت دارد. FSM به صورت تکه تکه در سلولهای با تقسیم فعالانه نمایان میشود که نشان دهند? ارتباط محکم  FSMبا مراحل چرخ? سلول ویژه میباشد.  هدف مضاعف در محل هیبریدشدگی لکه دار با ژنهای نشانگر چرخ? سلول نشان داد که FSM عمدتا در مرحل? G1 بیان میشود. در fsm، بیان دو ژن نشانگر که مراحل  S و G2 تا M را نشان میدهند، در SAM بهتر شد. علیرغم کاهش تعداد سلول ها در SAM، حاکی از آن است که مراحل S و G2 در fsm طولانی هستند. علاوه بر این، رویدادهای رشد در برگ های fsm  در زمان کامل رخ میدهد. این نشان میدهد که تنظیم موقتی رشد، جدا از دور? چرخ? سلول رخ میدهد. بر خلاف فنوتیپ خط دار (fascinated) Arabidopsis fas1، فنوتیپ fsm کاهش انداز? SAM رانشان داد. فنوتیپ های مخالف بین fsm و fas1 نشان میدهد که حفظ SAM بین برنج و آرابیدوپسیس به صورت متفاوت تنظیم میشود.

کلیدواژه ها:مریسم شاخه مسطح (Flattened shoot meristem)، برنج، مریستم راسی، CAF-1،چرخ? سلول، Fasciata1

مقدمه: در گیاهان آلی، تمام اندام های بالای زمینی و زیرزمینی از مریستم (بخشینه) های راسی شاخه (  SAMها) و مریستم (بخشینه) های راسی ریشه (RAM) تولید می شوند. این مریستم (بخشینه) ها قابلیت چندگان? pluripotency)) خود را حفظ می کنند و در سرتاسر مراحل تولید مثل و رویشی، مرتبا اندام و بافتهای جدید تولید میکنند. بنابراین، مکانیسم چگونگی حفظ کامل SAM اهمیت اساسی در بیولوژی گیاهی رشد و نمو دارد. ژن های متعددی که در حفظ SAM شرکت میکنند در آرابیدوپسیس شناخته شده اند.  SHOOT MERISTEMLESS (STM) و WUSCHEL (WUS) از جهش یافته های آنها به همراه تشکیل و یا حفظ  SAM برآمده شناسایی شدند  (Barton و Poethig، 1993) و( Laux و همکاران، 1996). STM ( لانگ و همکاران 1996) با KNOTTED1 ذرت ( هاک و همکاران 1989) و OSH1 برنج ( ماتسوکا و همکاران 1995) همولوگ (نظیر) میباشد. 

تأثیر امواج الکترومغناطیس میکروویو(MU ) و رادیوفرکانس(RF) بر تراکم قدرت غیرحرارتی در رنگدانه های شباهت دهنده در بافت های گیاهی مورد مطالعه قرار گرفت. افزایش رنگدان? فستوسنتتیک در هر دو مورد در مدت های پرتوگیری نسبتا کوتاه (1تا 4 ساعت) یافت شد. در حالی که در زمان پرتوگیری طولانی تر(12 ساعت) ، در گیاهانی که در معرض میکرویو بودند، کاهش محتوی رنگدانه ملاحظه شد. تصور می شود که افزایش کلی کارایی فتوسنتز  بر اساس داده های غیرمستقیم که بواسط? نسبت افزایش یافت? کلروفیل A/B بدست آمد، رخ می دهد. تأثیر برانگیزانندگی نسبی بر تجمع بیوماس در پرتودهی MW ملاحظه شد.

کلیدواژه: پرتو الکترومغناطیسی، Zea mays،نسبت کلروفیل، تجمع بیوماس

1.مقدمه:

از آنجائیکه "پنجر? میکروویو" جو باعث نفوذ پرتو کیهانی  با فرکانس های دامن? GHz مشود، در نتیجه همواره یک مولف? مکروویوی در زمین? پرتو کیهانی وجود دارد. در دنیای مدرن، با استفاده از میکروویو پیچید? منتشره از وسایل ارتباطی موجود در هوا ، سیستم های مراقبتی، صنعت، اهداف درمانی و تشخیصی در پزشکی- اهمیت آلودگی الکترومغناطیسی نیاز به تأکید بیشتر ندارد. یک نوشت? مفید در مورد تأثیر بیولوژیکی میدان های الکترومغناطیسی با فرکانس کم بر ارگانسم های گیاهی وجود دارد. اما به نظر می رسد که پاسخ های استنباط شده از گونه های گیاهی مختلف در یک روش پیچیده هم به پارامترهای فیزیکی و هم منبع تابش دهی (فرکانس،تراکم قدرت، پالس ها یا امواج هاپیوسته، طول مدت پرتوفکنی و غیره) و وضعیت مغناطیسی ماد? بیولوژی (مرحل? رویشی، پیش تیمار،محیط و غیره) بستگی دارد؛ علیرغم این، پارمترهای بیولوژیکی گوناگون منجر به آشکارشدن جنبه های گوناگون واکنش بین امواج الکترومغناطیسی و ماد? تحت تابش می شود. نمونه هایی در این باره وجود دارد که به آنها خواهم پرداخت.

 Muraji و دیگران (1998) گزارش دادند که یک میدان مغناطیسی با فرکانس کم تقریبا 10 Hz باعث تحریک رشد ریشه های غلات شده است. در حالی که در مورد فرکانس های بالا یعنی بالای 240 Hz، رشد متوقف شد.

اسید یاسمونیک (JA1) و متیل استر فرار آن یعنی MeJA سیکلوپنتانون های مشتق شده از اسید چرب هستند که یوبیکیتوس در قلمرو گیاهی رخ می دهند. از زمان کشف یاسمونات ها(JAها) در گیاهان در حدود 40 سال پیش، درک ما از بیوسنتز و کارکرد فیزیولوژیکی این ترکیبات بواسط? پیشرفت های متعدد مشخص شده است.  

آزمایشات انجام شده در ده? 1980 مسیر بیوسنتتیک JA را مشخص کرد و نشان داد که اعمال خارجی JAها بر طیف وسیعی از فرآیندهای فیزیولوژیکی تأثیر می گذارد. کشف اوایل ده? 1990 در مورد عملکرد JAها به عنوان نشانه های قوی بیان بازدارنده های پروتوئیناز(PIs)  دفاعی باعث شد که توجه ها وعلایق به سمت نقش فعال هورمونیJA  ها در دفاع جلب شود. تحقیقات ده? گذشته منجر به پیشرفت های اساسی مانند شناسایی ژن های رمزگذار اکثر آنزیم های بیوسنتتیک JA و کشف JAهای بیولوژیکی فعال و جدید شده است. شناسایی مجموع? بزرگی از بیوسنتز JA و میوتانت های(mutant) پاسخ ابزار مهمی در ارزیابی نقشJAها در فرآینده های مربوط به دفاع و رشد گیاه در اختیار ما قرار داده اند. وقوع گسترد? JAها در گیاهان و برخی یوکاریوت های lower (پست) و قابلیت آنها در تنظیم فرآیندهای فیزیولوژیکی در حیوانات(مثل حشرات) موید این نکته است که JAها از مزیت بیولوژیکی برخوردار هستند. 

بیوسنتز یاسمونات 

متابولیسم اوگزیلیپین در گیاهان و حیوانات

یاسمونات ها به خانواد? مشتقات اسید چرب اکسیژنی که در مجموع اگزیلیپین گفته می شوند و از طریق متابولیسم اکسایشی اسیدهای چرب دارای حلقه های اشباع نشده(polyunsaturated) تولید می شوند. در حیوانات،  اعضای گروه ایکوزانوئید(C20) واسطه های لیپید از اسید آراچیدونیک سنتز می شوند و به عنوان تنظیم گر تمایز سلول،  پاسخ های ایمنی و همواستاسیز عمل می کنند. در گیاهان، ترکیبات اکسیژنی که عمدتا از  C18 α- لینولنیک اسید (18:3) مشتق میشوند، طیف گسترده ای از فرآینده های مربوط به دفاع و رشد را کنترل می کنند. استدلال بیوشیمیایی پیرامون سنتز اگزیلیپین ها هم در گیاهان و هم در حیوانات به طور قابل ملاحظه های شبیه به هم است (شکل 1). گونه های هر دو قلمرو از سیتوکروم P450،  لیپواکسیژناز(LOX) و سیکلواکسیژناز یا فعالیت های شبیه به سیکلواکسیژناز (مانند α-اکسیژناز گیاهی) برای اکسید کردن سوبسترههای اسید چرب دارای حلقه های اشباع نشده استفاده می کنند. 

توزیع طولانی مسافت مواد جذبی در گیاهان عالی در سیستم مجرای غربالی  مرکزی آوند آبکشی رخ می دهد.  عموما پذیرفته شده که جریان مواد جذبی توسط یک اختلاف فشار که به صورت اسمزی تولید می شود و حدود 80 سال قبل توسط Ernst Mu¨ nch  پشنهاد شد،  هدایت می گردد. در بین سال های 1960 و 1980،  بعد از اینکه تصاویر میکروسکوپ الکترونیی نشان داد که مجراهای غربالی دارای موانعی هستند که جریان منفعل را متوقف می کند،  فرضی? جریان فشار با چالش و بحث مواجه شد. این امر منجر به پیشنهاد مکانیسم های جابجایی گوناگون شد. بااینحال،  اکثر پژوهشگران به این نتیجه رسیدند که موانع موجود در مسیر مجرای غربالی به دلیل مصنوعات آماده سازی است. پشرفت های اخیر در زمین? تصویر برداری زیستی توانایی ما در مطالع? آوند آبکشی را به طور قابل توجهی بیشتر کرده است. دود از انتظار است که مطالعات بافت زنده فرضی? فشار-جریان را بار دیگر به چالش بکشاند. در این مطالعه،  ما بررسی های فعلی درمورد ساختار و نقش آوند آبکشی را به صورت خلاصه بیان خواهیم کرد و تأثیر آن بر آگاهی و درک ما از انتقال طولانی مسافت در آوند آبکشی را توضیح خواهیم داد. 

کلید واژه: آوند آبکشی، عناصر غربالی، انتقال طولانی مسافت، فرضی?جریان فشار Mu¨ nch،  تصویربرداری با تفکیک بالا، فوریسوم ها،  اتاقک های رزوفر میکروسکوپ

مقدمه:

تکامل گیاهان خاکی منجر به پیچیدگی و انداز? بیشتر تن? گیاه شد که این امر به نوب? خود تقاضا برای تلفیق طولانی مسافت و انتقال نشانه را افزایش داد. بافت های آوندی به دو سیستم ریزسیال کارآمد با وظایف گوناگون تکامل یافتند. گزیلم شبکه ایی از کانال هایی است که شامل سلول های مرده می شود و آب و مواد مغذی را طریق آپوپلاست انتقال می دهد.  به عبارت دیگر،  انتقال assimilate ها در آوند آبکشی رخ می دهد. آوند آبکشی بافتی است که دارای سلول های زنده به نام عناصر غربالی است. ردیف های بهم پیوسته و متوالی عناصر غربالی مجراهای غربالی را شکل می دهند که وظاف این مجراها توسط سلول های همراه و پارانشیمای آوند آبکشی حمایت می شود. مجراهای غربالی آوند آبکشی بر خلاف گزیلم مواد سیال را در سیمپلاسم جابجا می کنند. تعاملات سایش با اجزاء سلول،  مقاومت سیستم مجرای غربالی را تعیین می کنند و در نتیجه مشاهد? افزایش متوالی حذف اندامک  در عناصر غربالی در طی تکامل گیاهان خاکی عجیب نیست.

 در گیاهان، پیری علاوه بر اینکه آخرین مرحله ایی که منجر به مرگ کل ارگانیسم میشود، در رشد و نمو گیاه نیز نقش دارد و در تجزی? هماهنگ ماکرومولکول ها و سیالیت مواد مغذی از بافت های رو به پیری به بافت های در حال نمو گیاه عمل میکند. تصور می شود که رادیکال های آزاد نقش اساسی در رشد و نمو گیاه داشته باشند، بویژه رادیکال های مشتق شده از اکسیژن. از آنجائیکه این مولکول ها شدیدا سمی هستند، سطوح متفاوت گونه های اکسیژن واکنشی باید بسیار منظم شوند. بااینحال پراکسید هیدروژن در غلظت های کم به عنوان مولکول نشانه دهی عمل میکند.  بنابراین، تنظیم هماهنگ سیستم جاروب رادیکال آزاد که شامل ترکیبات آنزیمی مانند کاتالاز، سوپراکسید دیسموتاز و آسکوربات پراکسیداز و مولکول های غیر آنزیمی میشود مانند آسکوربات و گلوتاتیون، ضروری و اساسی است. افزایش سطوح رادیکال در طی پیری نه تنها در اثر افزایش تولید رادیکال ها است بلکه به دلیل عدم ظرفیت آنتی اکسیدانی نیز میباشد. 

کلیدواژه: پیری برگ، تنش اکسایشی، رادیکال های اکسیژن آزاد، تنظیم پیری 

مخفف ها: ABA- اسید آبسیزیک؛ APX- آسکوربات پراکسیداز؛ CAT- کاتالاز ؛ HR- پاسخ فوق حساس؛ PCD؛مرگ سلول برنامه ریزی شده؛ JA- اسید یاسمونیک؛- ROS گون? اکسیژن واکنشی؛ SA-اسید سالیسیلیک؛ SAG- ژن مربوط به پیری؛ -SOD سوپراکسید دیسموتاز